1. Янчевская, Т. Г. Оптимизация минерального питания растений / Т. Г. Янчевская. – Минск : Беларус. навука, 2014. – 456 с.
2. Янчевская, Т. Г. Физиолого-биохимическая оптимизация минерального питания растений / Т. Г. Янчевская. – LAP LAMBERT Academic Publishing, 2018. ‒ 547 с.
3. Stimulation of cellular mechanisms of potato antivirus resistance by the action of a preparation based on Bacillus subtilis bacteria / Т. G. Yanchevskaya [et al.] // Appl. Biochem. Microbiol. ‒ 2018. ‒ Vol. 54, N 3. ‒ P. 324–330. https://doi.org/10.1134/S0003683818030158
4. Поликсенова, В. Д. Индуцированная устойчивость растений к патогенам и абиотическим стрессовым факторам (на примере томата) / В. Д. Поликсенова // Вестн. БГУ. Сер. 2, Химия. Биология. География. ‒ 2009. ‒ № 1. ‒ С. 48‒60.
5. Choudhary, D. K. Induced systemic resistance (ISR) in plants: mechanism of action / D. K. Choudhary, A. Prakash, B. N. Johri // Indian J. Microbiol. ‒ 2007. ‒ Vol. 47, N 4. ‒ P. 289–297. https://doi.org/10.1007/s12088-007-0054-2
6. Induced Systemic Resistance (ISR) and Fe deficiency responses in dicot plants / F. J. Romera [et al.] // Front. Plant Sci. ‒ 2019. ‒ Vol. 10. ‒ Art. 287. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00287
7. Salazar, L. F. Potato viruses and their control / L. F. Salazar. ‒ Lima, Peru : Intern. Potato Center (CIP), 1996. ‒ 214 p.
8. PR-белки как маркеры устойчивости озимой пшеницы (Triticum aestivum L.) к листовым патогенам / Е. В. Вязов [и др.] // Вес. Нац. aкад. навук Беларусі. Сер. біял. навук. – 2019. – Т. 64, № 3. – С. 286–291.
9. Peroxidases and lignification in relation to the intensity of water-deficit stress in white clover (Trifolium repens L.) / B.-R. Lee [et al.] // J. Exp. Botany. ‒ Vol. 58, N 6. ‒ P. 1271–1279. https://doi.org/10.1093/jxb/erl280
10. Инокуляция, накопление и идентификация вируса PVY картофеля в тест-растениях Nicotiana tabacum / В. Т. Хасанов [и др.] // Вестн. КАТУ им. С. Сейфуллина. ‒ 2012. ‒ № 4 (75). ‒ С. 31–36.
11. Crow, J. P. Dichlorodihydrofluorescein and dihydrorhodamine123 are sensitive indicators of peroxynitrite in vitro: implications for intracellular measurement of reactive nitrogen and oxygen species / J. P. Crow // Nitric Oxide. – 1997. – Vol. 1, N 2. – P. 145‒157. https://doi.org/10.1006/niox.1996.0113
12. A highly sensitive fluorescent micro-assay of H 2 O 2 release from activated human leukocytes using a dihydroxyphenoxazine derivative / J. G. Mohanty [et al.] // J. Immunol. Methods. ‒ 1997. ‒ Vol. 202, N 2. ‒ P. 133–141. https://doi.org/10.1016/s0022-1759(96)00244-x
13. Different responses of tobacco antioxidant enzymes to light and chilling stress / T. Gechev [et al.] // J. Plant Physiol. – 2003. – Vol. 160, N 5. – P. 509–515. https://doi.org/10.1078/0176-1617-00753
14. Запрометов, М. Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях / М. Н. Запрометов. – М. : Наука, 1993. – 272 с.
15. Bradford, M. A rapid and sensitive method for the quantization of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding / M. Bradford // Anal. Biochem. – 1976. – Vol. 72, N 1–2. – P. 248‒254. https://doi.org/10.1006/abio.1976.9999
16. Технология ДНК-типирования генов устойчивости ячменя к засухе: метод. указания / И. Н. Доманская [и др.]. – Минск : Право и экономика, 2011. – 31 с.
17. Пасалари, Х. Экспрессия генов защитного ответа в листьях трансгенного картофеля после обработки глифосатом / Х. Пасалари, А. Н. Евтушенков // Вестн. БГУ. Сер. 2, Химия. Биология. География. ‒ 2016. ‒ № 1. ‒ С. 31–35.
18. Инструкция по использованию иммуноферментного диагностического набора для определения вирусов картофеля / Рос. с.-х. акад. НПО по картофелеводству. – М. : Коренево, 2011. – 8 с.
19. Рокицкий, П. Ф. Биологическая статистика: учеб. пособие / П. Ф. Рокицкий. –3-е изд., испр. – Минск : Выш. шк., 1973. – 318 с.
20. Asada, K. The water-water cycle as alternative photon and electron sinks / K. Asada // Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. ‒ 2000. ‒ Vol. 355, N 1402. ‒ P. 1419–1431. https://doi.org/10.1098/rstb.2000.0703
