ФОТОФИЗИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ИНДОТРИКАРБОЦИАНИНОВЫХ КРАСИТЕЛЕЙ ПРИ КОМПЛЕКСООБРАЗОВАНИИ С СЫВОРОТОЧНЫМ АЛЬБУМИНОМ

Тарасов Д. С.; Самцов М. П.; Хлудеев И. И.; Малюшкова Е. В.; Семак И. В.

ФОТОФИЗИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ИНДОТРИКАРБОЦИАНИНОВЫХ КРАСИТЕЛЕЙ ПРИ КОМПЛЕКСООБРАЗОВАНИИ С СЫВОРОТОЧНЫМ АЛЬБУМИНОМ

Тарасов Д. С., Самцов М. П., Хлудеев И. И., Малюшкова Е. В., Семак И. В.

2022

https://doi.org/10.47612/0514-7506-2022-89-5-605-613

Исследованы фотофизические свойства индотрикарбоцианиновых красителей при комплексообразовании с сывороточным альбумином и оптимизирована методика обнаружения их образования с помощью электрофореза. В связи с деградацией молекул красителя под действием кислот поиск области локализации исследуемого красителя на поверхности гелевой пластины осуществлен путем регистрации спектров флуоресценции красителя до фиксации и визуализации белков с последующим завершением протокола получения электрофореграмм. Для минимизации возможного влияния свечения компонентов геля возбуждение осуществлялось излучением полупроводникового лазера с длиной волны 684 нм, возбуждающим флуоресценцию исследуемых красителей. Установлено, что положение максимумов и полуширины спектров флуоресценции красителей с ортофениленовым мостиком в цепи сопряжения в соответствующих локализации альбумина областях электрофореграммы совпадают с характеристиками испускания красителей в исходных растворах с альбумином, что позволяет выявить образование ковалентно связанных комплексов молекул красителей с альбумином.

Тарасов Д. С., Самцов М. П., Хлудеев И. И., Малюшкова Е. В., Семак И. В. ФОТОФИЗИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ИНДОТРИКАРБОЦИАНИНОВЫХ КРАСИТЕЛЕЙ ПРИ КОМПЛЕКСООБРАЗОВАНИИ С СЫВОРОТОЧНЫМ АЛЬБУМИНОМ. Журнал прикладной спектроскопии. 2022;89(5):605-613. https://doi.org/10.47612/0514-7506-2022-89-5-605-613

Цитирование

Список литературы

1. D. M. Dereje, C. Pontremoli, M. J. Moran Plata, S. Visentin, N. Barbero. Photochem. Photobiol. Sci., 21 (2022) 397—419, https://doi.org/10.1007/s43630-022-00175-6

2. N. Lange, W. Szlasa, J. Saczko, A. Chwiłkowska. Pharmaceutics, 13, N 6 (2021) 818, https://doi.org/10.3390/pharmaceutics13060818

3. A. A. Ishchenko. Russ. Chem. Rev., 60, N 8 (1991) 865—884, https://doi.org/10.1070/RC1991v060n08ABEH001116

4. L. Beverina, P. Salice. Eur. J. Org. Chem., N 7 (2010) 1207—1225, https://doi.org/10.1002/ejoc.200901297

5. L. Beverina, M. Sassi. Synlett, 25, N 4 (2014) 477—490, https://doi.org/10.1055/s-0033-1340482

6. L. Stackova, E. Muchova, M. Russo, P. Slavicek, P. Stacko, P. Klan. J. Org. Chem., 85, N 15 (2020) 9776—9790, https://doi.org/10.1021/acs.joc.0c01104

7. М. П. Самцов, Е. С. Воропай, Л. С. Ляшенко, Д. Г. Мельников, К. Н. Каплевский, А. П. Луговский. Журн. прикл. спектр., 78, № 1 (2011) 121—127, https://doi.org/10.1007/s10812-011-9432-y

8. E. S. Voropay, M. P. Samtsov, A. P. Lugovsky, E. A. Zhavrid, E. N. Alexandrova, Yu. P. Istomun, I. N. Zhuravkin. Exp. Oncol., 19 (1997) 56―60

9. Y. P. Istomin, E. N. Alexandrova, E. A. Zhavrid, E. S. Voropay, M. P. Samtsov, K. N. Kaplevsky, A. P. Lugovsky, A.A. Lugovsky. Exp. Oncol., 28, N 1 (2006) 80—82, https://exponcology.com.ua/article/655/the-effect-of-hypoxia-on-photocytotoxicity-of-tics-tricarbocyanine-dye-in-vitro

10. A. А. Lugovski, M. P. Samtsov, K. N. Kaplevsky, D. S. Tarasau, E. S. Voropay, P. T. Petrov, Y. P. Istomin. J. Photochem. Photobiol. A: Chem., 316 (2016) 31—36, https://doi.org/10.1016/j.jphotochem.2015.10.008

11. J. Atchison, S. Kamila, H. Nesbitt, K. A. Logan, D. M. Nicholas, C. Fowley, J. Davis, B. Callan, A. P. McHale, J. F. Callan. Chem. Commun., 53, N 12 (2017) 2009—2012, https://doi.org/10.1039/C6CC09624G

12. М. П. Самцов, Е. С. Воропай, К. Н. Каплевский, Д. Г. Мельников, Л. С. Ляшенко, Ю. П. Истомин. Журн. прикл. спектр., 76, № 4 (2009) 576—582, https://doi.org/10.1007/s10812-009-9223-x

13. М. П. Самцов, Е. С. Воропай, Д. Г. Мельников, Л. С. Ляшенко, А. А. Луговский, Ю. П. Истомин. Журн. прикл. спектр., 77, № 3 (2010) 438—444, https://doi.org/10.1007/s10812-010-9346-0

14. Н. В. Белько, М. П. Самцов, Д. С. Тарасов. Журн. Бел. гос. ун-та. Физика, № 3 (2020) 17—23, https://doi.org/10.33581/2520-2243-2020-3-17-23

15. М. П. Самцов, Д. С. Тарасов, А. П. Луговский, П. Т. Петров, А. О. Савин, Р. Д. Зильберман, Е. С. Воропай. Докл. БГУИР, 18, № 8 (2020) 5—13; https://doi.org/10.35596/1729-7648-2020-18-8-5-13

16. U. Chilakamarthi, L. Giribabu. Chem. Rec., 17, N 8 (2017) 775—802, https://doi.org/10.1002/tcr.201600121

17. N. V. Kudinova, T. T. Berezov. Biochem. (Moscow) Suppl. Ser. B: Biomed. Chem., 4, N 1 (2010) 95—103, https://doi.org/10.1134/S1990750810010129

18. A. Loureiro, N. G. Azoia, A. C. Gomes, A. Cavaco-Paulo. Current Pharm. Design, 22, N 10 (2016) 1371—1390, https://doi.org/10.2174/1381612822666160125114900

19. H. Jeong, M. Huh, S. J. Lee, H. Koo, I. C. Kwon, S. Y. Jeong, K. Kim. Theranostics, 1 (2011) 230—239, https://doi.org/10.7150%2Fthno%2Fv01p0230

20. B. Bhushan, V. Khanadeev, B. Khlebtsov, N. Khlebtsov, P. Gopinath. Adv. Coll. Interface Sci., 246 (2017) 13—39, https://doi.org/10.1016/j.cis.2017.06.012

21. C. Zhu, Y. Xia. Chem. Soc. Rev., 46, N 24 (2017) 7668—7682, https://doi.org/10.1039/C7CS00492C

22. Н. В. Белько, И. И. Хлудеев, В. П. Зорин, М. П. Самцов. Весцi БДПУ. Сер. 3. Фізіка. Матэматыка. Інфарматыка. Біялогія. Геаграфія, 1 (2018) 14—20, https://elibrary.ru/item.asp?id=37154997

23. H. Chen, A. Ji, S. Qiu, Y. Liu, Q. Zhu, L. Yin. Food Hydrocoll., 76 (2018) 173—183, https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2016.12.004

24. M. Kasran, S. W. Cui, H. D. Goff. Food Hydrocoll., 30, N 2 (2013) 552—558, https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2012.08.004

25. M. Li, H. Li, P. De, B. S. Sumerlin. Macromol. Rap. Commun., 32, N 4 (2011) 354—359, https://doi.org/10.1002/marc.201000619

26. S. M. Usama, C. M. Lin, K. Burgess. Bioconjugate Chem., 29, N 11 (2018) 3886—3895, https://doi.org/10.1021/acs.bioconjchem.8b00708

27. K. Manokruang, J. S. Lym, D. S. Lee. Mater. Lett., 124 (2014) 105—109, https://doi.org/10.1016/j.matlet.2014.03.052

28. K. Wilson, J. Walker. Principles and Techniques of Biochemistry and Molecular Biology, Cambridge University Press (2018) 219—252

29. W. F. Patton. Electrophoresis: An Int. J., 21, N 6 (2000) 1123—1144, https://doi.org/10.1002/(SICI)1522-2683(20000401)21:6%3C1123::AID-ELPS1123%3E3.0.CO;2-E

30. L. Gao, R. T. Smith. J. Biophoton., 8, N 6 (2015) 441—456, https://doi.org/10.1002/jbio.201400051

31. М. П. Самцов, А. Е. Радько, К. Н. Каплевский, К. А. Шевченко. Квантовая электроника: материалы V междунар. науч.-техн. конф., Минск, 22—25 ноября 2004 г., Минск, БГУ (2004) 20—24

32. U. K. Laemmli. Nature, 227, N 5259 (1970) 680—685

33. B. D. Hames. Gel Electrophoresis of Proteins: Practical Approach, OUP Oxford (1998) 1—352

34. S. F. S. Groth, R. G. Webster, A. Datyner. Biochim. Biophys. Acta, 71 (1963) 377—391, https://doi.org/10.1016/0006-3002(63)91092-8

35. S. Luo, N. B. Wehr, R. L. Levine. Anal. Biochem., 350, N 2 (2006) 233—238, https://doi.org/10.1016/j.ab.2005.10.048

36. Н. В. Белько, М. П. Самцов, А. П. Луговский. Журн. Бел. гос. ун-та. Физика, 2 (2020) 19—27, https://doi.org/10.33581/2520-2243-2020-2-19-27

37. Д. С. Тарасов, К. Н. Каплевский, М. П.Самцов, Е. С. Воропай. Вестн. БГУ, Сер. 1, № 2 (2015) 8—12

Источник

Информация

Автор

Тарасов Д. С. Институт прикладных физических проблем им. А. Н. Севченко, Белорусского государственного университета; Белорусский государственный университет
Самцов М. П. Институт прикладных физических проблем им. А. Н. Севченко, Белорусского государственного университета
Хлудеев И. И. Институт прикладных физических проблем им. А. Н. Севченко, Белорусского государственного университета
Малюшкова Е. В. Белорусский государственный университет
Семак И. В. Белорусский государственный университет

Страницы

605-613

Год издания

2022

Ключевые слова

Коллекции

Журнал прикладной спектроскопии