В ходе исследований установлено, что вирус кустистой карликовости малины (RBDV) можно диагностировать у растений-регенерантов малины в культуре in vitro методом DAS-ELISA теста, не получая ложноотрицательный результат. Из 14 растений 5 клонов малины сорта Heritage, адаптированных ex vitro, вирус RBDV был диагностирован у растения одного клона как на стадии in vitro, так и на стадии адаптации через 1,5 и 5,5 месяцев после высадки в нестерильные условия. Тестирование оставшихся 54 клонов в культуре in vitro выявило еще 17 клонов малины, зараженных вирусом RBDV, что позволило исключить их из процесса микроразмножения. У зараженных образцов оптическая плотность превышала оптическую плотность отрицательного контроля в 18–28 раз.
Колбанова Е. В., Божидай Т. Н. Возможность определения вируса кустистой карликовости малины (RBDV) у растений-регенерантов малины в культуре in vitro методом DAS-ELISA теста. Плодоводство. 2018;30(1):131-135.
1. Occurrence and distribution of Raspberry bushy dwarf virus in commercial plantations in England and Wales / D. J. Barbara [et al.] // Plant Pathology. – 2001. – Vol. 50. – P. 747–754.
2. New host for Raspberry bushy dwarf virus: arctic bramble (Rubus arcticus) / H. Kokko [et al.] // Europe Journal of Plant Pathology. – 1996. – Vol. 102, № 7. – P. 713–717.
3. Strik, B. Impact of Raspberry bushy dwarf virus on ‘Marion’ blackberry / B. Strik, R. R. Martin // Plant Disease. – 2003. – Vol. 87, № 3. – P. 294–296.
4. Converse, R. H. Diseases caused by virus and virus-like agents / R. H. Converse // Compendium of raspberry and blackberry diseases and insects / M. A. Ellis [et al.]. – St. Paul, 1991. – P. 42–58.
5. Волосевич, Н. Н. Оздоровление и размножение сортов малины на основе фитосанитарного мониторинга вирусов и культуры тканей in vitro: автореф. дис. … канд. биол. наук: 03.01.06 / Н. Н. Волосевич; Ин-т генетики и цитологии НАН Беларуси. – Минск, 2011. – 21 с.
6. Кухарчик, Н. В. Вирусные и фитоплазменные болезни плодовых и ягодных культур в Беларуси / Н. В. Кухарчик. – Минск: Беларус. навука, 2012. – 209 с.
7. Certification scheme for Rubus. EPPO Standards PM 4/10 (2) // Bulletin OEPP/EPPO. – 2009. – Vol. 39. – P. 271–277.
8. Волосевич, Н. Н. Диагностика вируса кустистой карликовости малины (RBDV) методом RT-PCR / Н. Н. Волосевич, Н. В. Кухарчик // Земляробства і ахова раслін. – 2010. – № 6. – С. 4–6.
9. Kokko, H. I. Single-step immunocapture RT-PCR in the detection of Raspberry Bushy Dwarf Virus / H. I. Kokko, M. Kivineva, S. O. Karenlampi // Biotechniques. – 1996. – Vol. 20, № 5. – P. 842–846.
10. Методика диагностики основных вирусных инфекций плодовых и ягодных культур / Н. В. Кухарчик [и др.]. – Минск: А. Н. Вараксин, 2015. – 32 с.
11. Rapid differentiation of closely related isolates of two plant viruses by polymerase chain reaction and restriction fragment length polymorphism analysis / D. J. Barbara [et al.] // Journal of Virological Methods. – 1995. – Vol. 55. – P. 121–131.
12. Detection of the phytosanitary status of stone fruit cultivars under in vitro conditions in Hungary / I. Balla [et al.] // Plant Protection Science. – 2002. – Vol. 38 (Special Issue 2). – P. 271–274.
13. Detection of important plant viruses in in vitro regenerated potato plants by double antibody sandwich method of ELISA / S.A. Khan [et al.] // Plant Tissue Culture. – 2003. – Vol. 13. – P. 21–29.
14. Enzyme-linked immunosorbent assay testing of shoots grown in vitro and the use of immunocapture-reverse transcription-polymerase chain reaction improve the detection of Prunus necrotic ringspot virus in rose / B. Moury [et al.] // Phytopathology. – 2000. – Vol. 90, № 5. – P. 522–528.
